Recombinant Cynomolgus GDF15 Protein

时间:2025年02月11日 来源:

质粒DNA提取后的储存条件对于保持其活性至关重要。以下是一些推荐的储存方法:1.**干燥保存**:质粒DNA以干粉状态保存是比较好的方法。如果总DNA以溶液形式保存,可以使用1×TE缓冲液稀释,且TE缓冲液的pH值应为8.0-8.5之间。2.**低温保存**:植物总DNA低温保存比较好在-80℃以下或液氮保存。如果没有条件,也可以在-20℃保存。总DNA应避免经常冻融,同时建议每份样品保存3-5个样本。总DNA提取后保存的时限通常较组织要长(>两年),但若长期保存,每隔两年应抽测,对不符合使用要求的DNA进行更新。3.**避免反复冻融**:反复冻融会破坏DNA的完整性和活性,因此应尽量避免。4.**使用保护剂**:化学添加剂如二甲基亚砜(DMSO)可以防止DNA单链断裂,但因其毒性和使用量的问题,并不是理想的保护剂。5.**封装技术**:通过封装技术保存DNA,可以隔绝外界水、氧气和光等可能影响DNA稳定的因素。例如,DNAshell®技术基于密封的不锈钢微型胶囊,在惰性气氛下,给予DNA干粉保护。6.**使用稳定剂**:一些天然的双糖,如海藻糖,被认为是一种多功能的保护剂,可以保护生物体免受冷冻、加热等不利条件的影响。FnCas12a产品不含DNA内切酶和外切酶,也不含RNA酶,保证了实验的准确性和重复性。Recombinant Cynomolgus GDF15 Protein,hFc Tag

Recombinant Cynomolgus GDF15 Protein,hFc Tag,标准物质

在DNA提取过程中避免RNA污染的关键在于采取一系列措施来确保RNA被有效去除或降解,同时保护DNA的完整性和纯度。以下是一些确保DNA提取过程中避免RNA污染的策略:1.**使用专门的DNA提取试剂盒**:选择高质量的DNA提取试剂盒,这些试剂盒通常已经包含了防止RNA污染的措施,如特定的裂解液和纯化步骤,能够有效去除RNA。2.**加入RNA酶(RNase)处理**:在DNA提取过程中加入RNase处理步骤,可以有效地去除残留的RNA污染。RNase是一种能够特异性降解RNA的酶,可以在不影响DNA完整性的前提下去除RNA污染。3.**优化实验操作步骤**:在破碎细胞时,选择合适的破碎方法和破碎时间,避免过度破碎导致RNA的释放;在DNA纯化阶段,控制好离心速度和时间,避免RNA的沉淀。4.**使用无RNase的试剂和耗材**:使用经过RNase-free处理的实验器材和试剂,确保实验过程中不会引入外源性RNA污染。5.**严格控制实验环境**:保持实验室台面和工作区域干净无尘,定期对实验室进行消杀,避免RNA酶污染。6.**个人防护和操作规范**:在处理DNA样品时,佩戴无菌手套和口罩,以减少呼吸道和皮肤污染的风险。使用不同的工具处理不同的样品,或者在处理前后彻底清洗工具,避免交叉污染。Recombinant Rat LIFTn5转座酶高通量测序建库、ATAC-seq 等多种先进的分子生物学技术,能够与这些技术很好地结合。

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Lambda核酸外切酶(LambdaExonuclease,简称λExonuclease)是一种具有特定特性和应用的酶,以下是其主要特点和应用:1.**特异性作用**:λExonuclease是一种5'→3'核酸外切酶,能选择性地沿5'→3'方向消化5'端磷酸化的双链DNA。2.**酶切活性**:对单链DNA和5'端未磷酸化修饰的DNA的酶切活性较低,不能从DNA的切刻或缺口处起始消化。3.**嗜磷酸性**:该酶具有非常强的嗜磷酸性,磷酸化的核酸链与非磷酸化的核酸链的切割效率相差达200倍以上。4.**切割效率**:Lambda核酸外切酶是一种具有高度持续性的碱性核酸外切酶,可以连续地将核酸切割成为单个碱基,切割比较高速率可以达到1000nt/S。5.**应用领域**:-生成单链PCR产物用于DNA测序。-DNA单链构象多态性(SSCP)分析。-滚环扩增。-从双链DNA片段生成单链DNA。-PCR产物的克隆。-质粒制备净化。6.**酶活性定义**:Oneunitisdefinedastheamountofenzymerequiredtoproduce10nmolofacid-solubledeoxyribonucleotidefromdouble-strandedsubstrateinatotalreactionvolumeof50μlin30minutesat37ºCin1XLambdaExonucleaseReactionBufferwith1μgsonicatedduplex[3H]-DNA。

为了确保PCR实验中BstDNAPolymeraseI的活性比较大化,以下是一些关键的优化措施:1.**反应缓冲液**:使用适合BstDNAPolymeraseI的反应缓冲液,如NEB提供的IsothermalAmplificationBufferIIPack,该缓冲液包含Tris-HCl、(NH4)2SO4、KCl、MgSO4和Tween®20,pH值为8.8,专为等温扩增设计。2.**反应条件**:BstDNAPolymeraseI的比较好反应温度通常在65°C左右。确保PCR仪能够精确控制并保持这一温度,以保证酶的活性和稳定性。3.**酶的浓度**:根据反应体系的需要调整BstDNAPolymeraseI的用量。过多的酶可能导致非特异性扩增,而过少则可能降低扩增效率。通常,一个单位的酶能够在65°C下,30分钟内将25nmol的dNTP掺入酸不溶性物质。4.**Mg2+浓度**:Mg2+是DNA聚合酶活性的关键辅因子。其浓度对PCR反应有影响,需要根据具体情况调整Mg2+浓度,以获得比较好的扩增效果。5.**dNTPs浓度**:dNTPs是DNA合成的基础原料,其浓度约为200-300μM较为适宜。过高会增加非特异性扩增。6.**引物设计**:设计特异性引物,通常长度为18-30个碱基,Tm(熔解温度)相近,以保证同时退火。7.**模板DNA的质量和纯度**:确保模板DNA无蛋白质、RNA和其他杂质的污染,这些杂质可能会抑制酶的活性。在某些糖蛋白的纯化方案中,利用 Endo H 对糖链的特异性水解作用,去除糖蛋白上的糖链。

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Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL) 是一种从嗜热脂肪芽孢杆菌(Thermophilic Geobacillus sp)DNA聚合酶I衍生的酶,缺乏5'-3'外切核酸酶活性。以下是关于Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL)的一些关键信息:来源和特性:Bst Plus DNA Polymerase 具有更强的5'-3' DNA聚合酶活性、链置换活性和dUTP耐受性,适合用于抗污染的等温扩增反应,如LAMP和CPA等。应用:主要应用于等温DNA扩增,包括环介导等温扩增(LAMP)和其他等温扩增技术。规格:活性定义:1 U指的是在65°C下30分钟内将10 nmol的dNTP整合到酸不溶物质中的酶的量。溶液成分:包含10 mmol/L Tris-HCl、50 mmol/L KCl、0.1 mmol/L EDTA、1 mmol/L DTT、0.1% Triton X-100、50% 甘油,pH 7.5 @ 25℃。产品形式:提供的产品包括Hieff® Bst Plus DNA Polymerase (40 U/μL),货号14402ES,以及冻干粉形式的产品,货号14405ES,不含甘油。灵敏度和稳定性:Bst Plus DNA Polymerase 具有高灵敏度,低至5copies目的基因可测,且在飞克(fg)级别的模板量下也能快速达到阈值。在37°C下,该酶可以保持相对稳定的效应长达5天,并且在-20℃下可以稳定保存2年。储存条件:建议在-25℃至-15℃下储存,以保持产品活性,并避免反复冻融。UBE2L3作为泛素化途径中的关键酶,其在蛋白质降解、信号传导、细胞周期控制等重要内容有着作用。Recombinant Human APOH Protein,His Tag

Multiplex Probe qPCR Mix 已预混了低浓度ROX参比染料,适用于需要低浓度ROX校正的荧光定量PCR仪 。Recombinant Cynomolgus GDF15 Protein,hFc Tag

CUT&RUN和ChIC是两种用于研究蛋白质-DNA相互作用的技术,它们有一些关键的区别:1.**技术原理**:-**ChIC(ChromatinImmunocleavage)**:ChIC技术利用抗体将感兴趣的蛋白与ProteinA-MNase相结合来进行DNA切割。ChIC的优势在于使用TF特异性抗体系住MNase,并只在结合位点裂解。-**CUT&RUN(CleavageUnderTargetsandReleaseUsingNuclease)**:CUT&RUN技术则是在核的轻微MNase处理后释放单核小体和TF-DNA复合物,留下寡核小体。CUT&RUN通过在冰上进行简短的消化反应,在TF结合的MNase扩散到周边的基因组和裂解可接近的染色质之前在上清中恢复TF-DNA复合物。2.**操作步骤和简便性**:-**ChIC**:ChIC可能需要甲醛固定操作,这可能重新引入了ChIP-seq的一些问题,如交联导致的DNA和蛋白质的化学修饰。-**CUT&RUN**:CUT&RUN简化了操作步骤,使用磁珠固定细胞核,适用于新鲜和冷冻组织样本,缩短了生成DNA测序文库的时间(1-2天)。3.**背景信号和信噪比**:-**ChIC**:ChIC产生的背景信号可能较高,因为它可能涉及到非特异性的DNA切割。

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