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PCR实验技术中的定量PCR（QuantitativePCR）介绍：由于序列扩增的产量依赖于模板DNA的量，所以PCR常用于对样品中DNA进行定量，常用的应用是基因表达的定量。终点法PCR是一种可能的方法，但其有较大的缺点，通过凝胶电泳来检测产量，检测的灵敏度非常有限。更重要的是，使用终点PCR是在PCR反应结束后进行定量，此时扩增已经达到平台期（图11），DNA凝胶染色的强度与DNA起始量不成线性关系。尽管如此，通过终点法PCR可以对基因表达进行半定量，可以使用一系列稀释程度不同的DNA样本作为模板起始量，或者在特定的PCR循环处获取扩增产物，然后通过凝胶显色强度来估计基因的表达量。哪些公司可以做pcr检测？陕西pcr检测

长片段PCR通常指扩增大于5kb的DNA的片段。长片段PCR传统上使用TaqDNA聚合酶（为了快速延伸）和高保真酶（为了准确度）的混合物。随着高合成能力、高保真DNA聚合酶的发明，长片段PCR现在可在短时间内高准确性的完成。通过与一个强DNA结合蛋白的结合，聚合酶可获得高扩增能力，可在短时间内扩增长片段（如>20kbgDNA的片段）。初次之外，极高保真度（如>100xTaq）可确保长片段扩增的低错误率。当扩增>10kb的片段时，PCR实验方案可能需要在以下5个关键位置进行适当优化：确保使用高质量、高纯度的DNA样本。如果DNA聚合酶的热稳定较低，使用更多量的DNA聚合酶以弥补多次循环中的聚合酶活性损失。降低退火和延伸步骤的温度，以助于引物结合。适当增加PCR步骤的时间，以促进模板DNA的完全分离及引物的结合。适当增加PCR延伸时间确保目的片段的全长扩增。高质量pcr价格英瀚斯生物pcr，不只是检测，还有专业数据分析。

PCR引物设计的原则PCR反应中有两条引物，即5′端引物和3′引物。设计引物时以一条DNA单链为基准（常以信息链为基准），5′端引物与位于待扩增片段5′端上的一小段DNA序列相同；3′端引物与位于待扩增片段3′端的一小段DNA序列互补。（1）引物设计的基本原则引物长度：15-30bp，常用为20bp左右。引物碱基：G+C含量以40-60%为宜，G+C太少扩增效果不佳，G+C过多易出现非特异条带。ATGC比较好随机分布，避免5个以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列参照。引物内部不应出现互补序列。两个引物之间不应存在互补序列，尤其是避免3′端的互补重叠。引物与非特异扩增区的序列的同源性不要超过70%，引物3′末端连续8个碱基在待扩增区以外不能有完全互补序列，否则易导致非特异性扩增。引物3‘端的碱基，特别是较末及倒数第二个碱基，应严格要求配对，比较好选择是G和C。引物的5′端可以修饰。如附加限制酶位点，引入突变位点，用生物素、荧光物质、地高辛标记，加入其它短序列，包括起始密码子、终止密码子等。

PCR实验技术中的Touch-downPCR介绍：Touch-downPCR又称降落PCR.即选定一个温度范围，如50—35℃，每降1-2℃进行1-2个循环，然后在50度下进行15个循环。Touch-down的原理随着退火温度的降低，特异性逐步降低，但特异性条带在温度较高时已经扩增出来，其浓度远远超过非特异性条带，随着退火温度的降低，特异性条带优先被扩增。选择初始复性温度的原则起始复性温度应该比引物的Tm值高出5-10度，然后每个循环递减1-2度Touch-downPCR的应用范围lowcopyoftargetedDNA;highdegreedegeneracy(orlessspecific)ofthefirstsetofprimers;荧光定量pcr和实时定量pcr的区别？

PCR反应五要素：参加PCR反应的物质主要有五种即：引物(PCR引物为DNA的片段，细胞内DNA复制的引物为一段RNA链）、酶、dNTP、模板和缓冲液（其中需要Mg2+）。引物有多种设计方法，由PCR在实验中的目的决定，但基本原则相同。PCR所用的酶主要有两种来源：Taq和Pfu，分别来自两种不同的噬热菌。其中Taq扩增效率高但易发生错配。Pfu扩增效率弱但有纠错功能。所以实际使用时根据需要必须做不同的选择。模板即扩增用的DNA，可以是任何来源，但有两个原则，1号纯度必须较高，第二浓度不能太高以免抑制。缓冲液的成分较为复杂，除水外一般包括四个有效成分：缓冲体系，一般使用HEPES或MOPS缓冲体系；一价阳离子，一般采用钾离子，但在特殊情况下也可使用铵根离子；二价阳离子，即镁离子，根据反应体系确定，除特殊情况外不需调整；辅助成分，常见的有DMSO、甘油等，主要用来保持酶的活性和帮助DNA解除缠绕结构。pcr检测做不好都有哪些原因？山东荧光定量pcr

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PCR实验技术中的免疫-PCR(immuno-PCR)介绍：免疫-PCR(immuno-PCR)是新近建立的一种灵敏、特异的抗原检测系统。它利用抗原-抗体反应的特异性和PCR扩增反应的极高灵敏性来检测抗原，尤其适用于极微量抗原的检测。免疫-PCR试验的主要步骤有三个:①抗原-抗体反应，②与嵌合连接分子结合，③PCR扩增嵌合连接分子中的DNA(一般为质粒DNA)。该技术的关键环节是嵌合连接分子的制备。在免疫-PCR中，嵌合连接分子起着桥梁作用，它有两个结合位点，一个与抗原抗体复合物中的抗体结合，一个与质粒DNA结合，其基本原理与ELISA和免疫酶染色相似，不同之处在于其中的标记物不是酶而是质粒DNA，在操作反应中形成抗原抗体-连接分子-DNA复合物，通过PCR扩增DNA来判断是否存在特异性抗原。免疫PCR优点为:①特异性较强，因为它建立在抗原抗体特异性反应的基础上。②敏感度高，PCR具有惊人的扩增能力，免疫PCR比ELISA敏感度高105倍以上，可用于单个抗原的检测。③操作简便，PCR扩增质粒DNA比扩增靶基因容易得多，一般实验室均能进行。陕西pcr检测

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