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时间:2022年01月05日 来源:

PCR出现假阳性的原因分析。引物设计不合适:选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行PCR扩增时,扩增出的PCR产物为非目的性的序列。靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。需重新设计引物。靶序列或扩增产物的交叉污染:这种污染有两种原因:一是整个基因组或大片段的交叉污染,导致假阳性。这种假阳性可用以下方法解决:①操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样器内或溅出离心管外。②除了酶及其他不耐高温的物质外,所有试剂或器材均应高压消毒。所用离心管均应一次性使用。③必要时,在加标本前,反应管和试剂用紫外线照射,以破坏存在的核酸。二是空气中的小片段核酸污染,这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。可互相拼接,与引物互补后,可扩增出PCR产物,而导致假阳性的产生,可用巢式PCR方法来减轻或消除。pcr检测实验多久出结果?陕西细胞pcr哪家好

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PCR实验技术中的定量PCR(QuantitativePCR)介绍:由于序列扩增的产量依赖于模板DNA的量,所以PCR常用于对样品中DNA进行定量,常用的应用是基因表达的定量。终点法PCR是一种可能的方法,但其有较大的缺点,通过凝胶电泳来检测产量,检测的灵敏度非常有限。更重要的是,使用终点PCR是在PCR反应结束后进行定量,此时扩增已经达到平台期(图11),DNA凝胶染色的强度与DNA起始量不成线性关系。尽管如此,通过终点法PCR可以对基因表达进行半定量,可以使用一系列稀释程度不同的DNA样本作为模板起始量,或者在特定的PCR循环处获取扩增产物,然后通过凝胶显色强度来估计基因的表达量。陕西细胞pcr要多久pcr检测样本的保存要求与方法?

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PCR实验技术中的直接PCR(DirectPCR)介绍:直接PCR意指直接从样本中扩增目的DNA,而无需核酸纯化。直接PCR中,在高温变性阶段,诸如细胞、组织等材料在独特的缓冲液中裂解,释放出DNA。因此这种方法简化了PCR实验流程,减少了动手操作的时间,同时可避免纯化步骤中DNA的损失。推荐具有高合成能力的DNA聚合酶用于直接PCR扩增。细胞碎片、蛋白、脂质和多糖也随DNA释放到裂解液中,它们会抑制PCR反应。具有高合成能力的DNA聚合酶可以耐受这些抑制剂,从而使直接PCR成为可能。具有高合成能力的聚合酶通常具有更高灵敏度,因此可从未纯化样本中扩增微量的DNA。

PCR引物设计的原则PCR反应中有两条引物,即5′端引物和3′引物。设计引物时以一条DNA单链为基准(常以信息链为基准),5′端引物与位于待扩增片段5′端上的一小段DNA序列相同;3′端引物与位于待扩增片段3′端的一小段DNA序列互补。(1)引物设计的基本原则引物长度:15-30bp,常用为20bp左右。引物碱基:G+C含量以40-60%为宜,G+C太少扩增效果不佳,G+C过多易出现非特异条带。ATGC比较好随机分布,避免5个以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列参照。引物内部不应出现互补序列。两个引物之间不应存在互补序列,尤其是避免3′端的互补重叠。引物与非特异扩增区的序列的同源性不要超过70%,引物3′末端连续8个碱基在待扩增区以外不能有完全互补序列,否则易导致非特异性扩增。引物3‘端的碱基,特别是较末及倒数第二个碱基,应严格要求配对,比较好选择是G和C。引物的5′端可以修饰。如附加限制酶位点,引入突变位点,用生物素、荧光物质、地高辛标记,加入其它短序列,包括起始密码子、终止密码子等。荧光定量pcr和实时定量pcr的区别?

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PCR实验技术中的连接酶链反应(Ligasechainreaction,LCR)介绍:连接酶链反应(Ligasechainreaction,LCR),是一种新的DNA体外扩增和检测技术,主要用于点突变的研究及靶基因的扩增。连接酶链反应是Backman1997年为检出靶基因序列中的点突变而设计发明,并申报了**。1988年Landegren也进行了该项研究。1988年Backman等又因分离热稳定的连接酶,1991年Backman和Barany分别用耐热DNA连接酶进行了LCR试验。耐热DNA连接酶可以在热循环中保持活性,提高连接反应的特异性,排除了背景扩增和免除了不断补充酶的繁琐程序。做pcr检测,需要注意哪些事项?陕西有哪些pcr检测

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PCR反应的特异性强,其决定因素为:①引物与模板DNA特异正确的结合;②碱基配对原则;③TaqDNA聚合酶合成反应的忠实性;④靶基因的特异性与保守性。其中引物与模板的正确结合是关键。引物与模板的结合及引物链的延伸是遵循碱基配对原则的。聚合酶合成反应的忠实性及TaqDNA聚合酶耐高温性,使反应中模板与引物的结合(复性)可以在较高的温度下进行,结合的特异性明显增加,被扩增的靶基因片段也就能保持很高的正确度。再通过选择特异性和保守性高的靶基因区,其特异性程度就更高。陕西细胞pcr哪家好

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