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消化系统疾病动物模型

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1胃黏膜对卵白蛋白过敏引起的胃溃疡

【操作步骤】3月龄以上的多**鼠，雄雌不限，3μg卵白蛋白和1mg氢氧化铝的混合物溶解于0.2ml盐水，腹腔注射。

【结果分析】非洲多**鼠的过敏性溃疡的大体形态与人类的消化性溃疡极为相似。多**鼠对研究胃病也是一种合适的动物，因为它还存在另外两种与人类相似的情况，即有发生类*与腺*的倾向。多**鼠可从日、美等国的实验动物供应商处获得。

2十二指肠溃疡

【操作步骤】成年SD大鼠，雄雌不限，皮下注射丙腈或羟基乙胺200mg/kg，迅速引起进行性十二指肠溃疡。【结果分析】使用该方法制备的模型病理形态改变与人类患者相似，溃疡见于球部前壁，直径2～4mm，常引起穿孔或穿透到内脏，小的溃疡常位于球部后壁，穿透至胰腺。模型可用于十二指肠溃疡的发病机理、实验***的研究。 哪家公司实验动物模型成功率比较高？辽宁实验动物模型外包

肝炎实验动物模型

6.1自身免疫性肝病动物模型应用成年豚鼠，在无菌条件下，先使豚鼠肝素化，而后用生理盐水经门脉进行肝脏灌流，剪断动、静脉以驱除肝内存血。除去胆囊、胆管及其他组织。将肝剪成小块，再以生理盐水浸洗直至无血色。取湿重10g的肝组织，加100ml生理盐水，在组织匀浆器中以8000转/分转4min制成10％的肝悬液。按1：1的比例加入弗氏佐剂，用小注射器往返抽注制成乳剂。成年豚鼠用上述乳剂腹腔注射2ml及4个足垫皮内注射0.1ml。每周一次，免疫1个月后，肝脏内可发生水肿样变性、嗜酸性坏死、肉芽肿样病灶、胆管上皮增生及淋巴细胞和嗜伊红细胞浸润。

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6.2转基因乙肝模型【操作步骤】构建人乙型肝炎病毒(HBV)全基因或部分基因质粒，通过转基因技术将乙型肝炎病毒插入到小鼠基因组上，形成能产生乙型肝炎的小鼠品系。【结果分析】乙型肝炎病毒转基因小鼠，有病毒复制，可用于研究HBV基因结构和功能、基因表达的调控、HBV的复制等。乙型肝炎病毒转基因小鼠会发生免疫逃避，不产生和人类乙型肝炎相近的病理表现。目前，中国医学科学院、***医学科学院、上海复旦大学和广州空军医院拥有乙型肝炎病毒转基因小鼠。 福建专业实验动物模型怎么样实验动物模型建立，就找英瀚斯生物。

常见自发性实验动物模型1.免疫缺陷动物疾病模型1）B淋巴细胞缺陷疾病模型CBA/A小鼠，起源于CBA/H品系，特点是B淋巴细胞功能减退，为X-链隐性突变系，基因符号是Xid。临床表现为免疫球蛋白缺失，细胞免疫正常。2）T淋巴细胞缺陷疾病模型裸小鼠，主要特征为无毛、裸着的、无胸腺和细胞免疫功能丧失，由于第十一对染色体上等位基因突变引起。该鼠免疫能力低，易传染，生长不良，繁殖力低。这种动物能接受同种或异种组织移植，包括人cancer异种移植，可作为cancer免疫研究。国内常用裸小鼠品系为BALB/Cnu/nu,Swissnu/nu和NCnu/nu等，维持费较高。现也有裸大鼠、裸豚鼠等。图片2.自发性糖尿病动物模型KK糖尿病小鼠属先天遗传缺陷性小鼠。该鼠对胰岛素不敏感、对葡萄糖耐性小、糖尿病发病率高、老年鼠偶见肥胖。BBWistar大鼠是一种典型自发遗传Ⅰ型（胰岛素依赖性）糖尿病，发病率50-70%，临床表现为多饮、多食、gao血压、酮症、胰岛内β-细胞大量破坏等。NIH肥胖大鼠(SHR/N-cp)是新培育的一种用于肥胖和糖尿病研究的动物模型，表现出与人非胰岛素依赖性糖尿病相似的代谢改变。

衰老实验动物模型，英瀚斯生物小编为您介绍。人类衰老机制研究和抗d衰老药物筛选的重要手段是选择合适的衰老动物模型。应用衰老动物模型对AD进行实验研究具有一定的表率意义。在实验研究中应用的衰老动物模型主要有自然衰老动物模型和快速老化动物模型。自然衰老模型，自然衰老动物模型是通过对1~2月龄的大小鼠日常维持饲养到小鼠18~24月龄、大鼠24月龄基本相当于人类56 ~ 70岁来构建衰老动物模型。自然衰老动物模型建模简单，在衰老期时出现脑内神经元变性、胆碱能功能降低、感觉、行为和记忆障碍等与临床患者相似的各种病理特征。因此，在AD研究中自然衰老动物模型作为优先动物模型。但自然衰老模型的缺点是建模时间较久，一般情况下要饲养15个月以上（虽可以直接购买适龄动物，但成本非常高），由于在建模过程中饲养时间过长，投入的人力和物力成本相对较大，另外，在饲养过程中传染其他疾病机率也相对较高且健康状态较差，特别是进入老龄期后容易死亡，在后期样本检测中个体差异大。实验动物模型，常见问题汇总。

蛛网膜下腔出血系由脑底或脑表部位的血管破裂，血液破入蛛网膜下腔引起。颅内动脉瘤，脑动、静脉畸形，血压高动脉硬化等为常见病因。蛛网膜下腔出血后可引起脑血管痉挛。因此，蛛网膜下腔出血和迟发性脑血管痉挛的模型有许多共同之处，造模时可同时作为参考。

英瀚斯熟练掌握蛛网膜下腔出血造模，及其他动物模型。

复制方法 ：健康大鼠，雌雄不拘，体重为250～350g。将钓鱼线剪成长约50mm，并在18mm处作标记，酒精消毒后置于无菌生理盐水中备用。麻醉后仰卧固定，剃除颈部毛发，手术区域皮肤消毒。颈正中切口，分离右侧颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉，结扎、切断颈外动脉分支及颈总动脉分叉处小动脉，并游离颈外动脉主干，沿着颈内动脉暴露翼腭动脉，在颈外动脉残端放一丝线，使其呈一松结。在翼腭动脉起始部置一微动脉夹，同时夹闭颈总动脉及颈内动脉主干近端。在颈外动脉残端剪一小口，将制备好的栓线插入。此时将颈外动脉残端处丝线的松结拉紧，除去颈内动脉的动脉夹，继续将丝线沿着颈内动脉插入，直至感到有阻力，这时稍用力再插入1.0～1.5mm后有落空感即可抽出丝线并除去微动脉夹。栓线的直径及插入的深度根据动物的体重而定。 常规实验动物模型制作。山东常见实验动物模型哪家好

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