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Real-time PCR从用途上分可以分为定性分析和定量分析:定性分析指的是用于分析待检测的样本中是否存在我们想要检测的成分,即待检测成分有无的分析。通常,定性分析可以应用于病毒以及病原菌的检测,物种鉴定以及基因分型等。病毒及病原菌检测,如SARS、H1N1病毒,都可以通过Real-time PCR的方法进行高灵敏度的检测,定性分析样本是否已被病毒传播。物种鉴定如我们国家的一些检验检疫机构,想要检测进口的牛肉制品中是否含有鸡源、猪源或鸭源等成分,或者用于检测羊奶中是否会掺有牛奶等等,可以通过Real-time PCR的方法进行检测。基因分型,如啤酒型,肥胖型基因的检测,就是Real-time PCR在基因分型方面的应用。在不同的PCR反应管中加入已定量的内标和引物,内标用基因工程方法合成。常州细胞RT-PCR检测技术供应商

为了便于对所检测样本进行比较,在real-timeQ-PCR反应的指数期,首先需设定一定荧光信号的域值,一般这个域值(threshold)是以PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号(baseline),荧光域值的缺省设置是3~15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。如果检测到荧光信号超过域值被认为是真正的信号,它可用于定义样本的域值循环数(Ct)。Ct值的含义是:每个反应管内的荧光信号达到设定的域值时所经历的循环数。研究表明,每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系,起始拷贝数越多,Ct值越小。利用已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线,因此只要获得未知样品的Ct值,即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。广州细胞荧光PCR网站实时荧光定量PCR实现了每一轮循环均检测一次荧光信号的强度。

Real-time PCR链式反应:每次循环都得加入新的DNA聚合酶,不但操作烦琐,而且价格昂贵,制约了PCR技术的应用和发展。耐热DNA聚合酶-Taq酶的发现对于PCR的应用有里程碑的意义,该酶可以耐受90℃以上的高温而不失活,不需要每个循环加酶,使PCR技术变得非常简捷、同时也降低了成本,PCR技术得以大量应用,并逐步应用于临床。多重连接依赖探针扩增允许用单个引物对扩增多个靶标,从而避免多重PCR的分辨率限制。引物的设计注意事项:1,注意引物设计好后的产物长度。Real-time PCR的较佳产物长度在150-250kb左右(书上说这样可以增加荧光的敏感度,减少实验误差,但是我对这个说法持怀疑态度。产物长度越大,SYBR嵌入的越多,这样才能够保证之后的荧光值比较可信)。2,不同的管家基因扩增效率不同。所以在做整个实验之前应该做一次检测扩增效率的实验。如果扩增效率相差太大,就不能使用delt,deltCt法来比较基因表达量的高低。
Real-time PCR链式反应的常见问题:靶序列变异:如靶序列发生突变或缺失,影响引物与模板特异性结合,或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列,其PCR扩增是不会成功的。假阳性:出现的PCR扩增条带与目的靶序列条带一致,有时其条带更整齐,亮度更高。引物设计不合适:选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行PCR扩增时,扩增出的PCR产物为非目的性的序列。靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。需重新设计引物。出现片状拖带或涂抹带:PCR扩增有时出现涂抹带或片状带或地毯样带。其原因往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多引起。其对策有:减少酶量,或调换另一来源的酶。②减少dNTP的浓度。适当降低Mg2+浓度。增加模板量,减少循环次数。聚合酶链式反应准备:PCR所用的酶主要有两种来源:Taq和Pfu,分别来自两种不同的噬热菌。Real-time PCR技术即实时萤光定量PCR避免了传统PCR以终产物监测定量产生的偏差。

Real-time PCR与普通PCR的实验目的不同,所以对引物的设计要求也不同。普通PCR的实验目的只是为了获得目的基因产物,允许有非特异扩增,只要目标条带清晰明亮,就可以通过切胶回收的方法回收目标条带,之后进行后续的克隆、测序。但Real-time PCR的目的是为了让目的基因按照理论值或是按照接近理论值进行扩增,只有这样的扩增后续由Ct值推算出的起始量模板量才准确,基于此,Real-time PCR对非特异性扩增和引物二聚体的存在有较严格的要求。聚合酶链反应为这些技术提供了大量的纯DNA,有时是单链的。广州细胞荧光PCR网站
Real-time PCR提高实验的重复性。常州细胞RT-PCR检测技术供应商
Real-time PCR从用途上分可以分为定性分析和定量分析:定量分析可以分为定量和相对定量两种。定量指的是我们想知道某个基因在初始样品中具体的拷贝数或浓度是多少?定量实验必须使用已知拷贝数的标准品,必须做标准曲线。而相对定量是指我们想知道某一个基因在不同样品中表达量的差异,其目的是测定目的基因在两个或多个样本中的含量的相对比例,而不需要知道它们在每个样本中的拷贝数。举例来说,如研究项目中包括使用高盐胁迫处理的样本和未高盐胁迫处理的样本,记为已处理样本和未处理样本,通常可以将未处理样本指定为基准,规定其目的基因浓度为100%,用已处理样本的定量结果除以未处理样本的定量结果,就可以计算每个已处理样本的基因含量相对于未处理样本的百分比。相对定量可以应用于差异显示结果验证、基因芯片结果验证、siRNA效果确认、mRNA表达量分析等等。常州细胞RT-PCR检测技术供应商
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