浙江病毒载体整合位点实验室

2020年9月发布的《细胞zhiliao产品申请临床试验药学研究和申报资料的考虑要点》“生产工艺开发的技术要求”及“质量研究和质量控制中的安全性研究”部分要求提供目的基因在染色体中的整合情况及提供细胞恶性转化（成瘤性和致瘤性）进行安全性研究和评估内容。2020年2月发布的《免疫细胞zhiliao产品临床试验技术指导原则（试行）》中规定：探索性临床试验的安全性和耐受性要考虑"外源基因随机整合到细胞基因组形成插入突变，导致成瘤性和恶性转化等"。在靶向CD19的CAR-T临床试验中,慢病毒传染的CAR-T整合位点显示出更的抗效力。浙江病毒载体整合位点实验室

在开展除恶性liu外其他适应症的临床研究时，每一剂量水平的受试者数量还应考虑不同适应症人群对风险的可接受程度，或者安全性的评价要求，可能需要通过更大的样本量提供更充分的安全性信息。此外，其他研究目的，如耐受性、制备可行性和药理学活性评估，也可能影响样本量或剂量增幅的选择。免疫细胞zhiliao产品可能在受试者体内长期存活，在对产品毒性和活性持续时间有初步了解之前，可能较难预测重复给药的风险。因此，很多shou次用于人体的免疫细胞zhiliao产品采用单次给yaofang案。但是，对于某些产品如zhiliao性细胞疫苗，当已有研究证据提示安全性风险较低且多次给药可能增加活性时，在早期试验中有可能采用多次给药的方式。南通基因编辑整合位点报告通过分选CAR-T 细胞,对T细胞受体(TCR)β链库进行深度测序(TCR-seq)以及慢病毒载体整合位点(LVIS)分析。

通常不需要进行标准的遗传毒性组合试验，但应根据基因zhiliao产品的特点、产品的具体适应症、载体的已有信息、导入基因序列结构等，评估基因zhiliao产品整合进基因组的可能性，判断是否需要开展另外的遗传毒性研究，如研究基因组修饰的发生情况，并检测随后可能发生的异常细胞行为；评估插入突变（插入位点、插入拷贝数等）引起的遗传毒性风险。当基因zhiliao产品采用基因编辑或转座子技术时，需要关注脱靶编辑、转座子转座印迹引起的遗传毒性问题；鉴定/表征基因组整合位点。

2018年CTL019的一项临床试验中，一名B-ALL病人在接受CAR-CD19zhiliao28天后即达到CR，却在6个月后复发，PCR检测没有发现任何的RCL，结合持续性慢病毒插入位点的克隆丰度分析，研究者较终发现一个携带CAR插入位点的CAR-B细胞克隆。进而发现这个B细胞是CAR-T生产过程中的一个CAR-B副产物，而CAR在该B细胞上的顺式插入表达导致CAR靶标表位屏蔽，导致该B细胞克隆的耐药。这个案例也提示除去CAR-Tzhiliao方法本身的潜在风险外，CAR-T在生产工艺也会产生二次成瘤的风险。如何确定慢病毒/逆转录病毒前病毒整合位点？

生殖毒性基因zhiliao产品应根据受试物的产品类型、作用机制、一般毒理发现、生物分布特征以及患者人群来评估潜在的生殖/发育毒性风险。生殖毒性试验的研究策略和风险评估可参考ICHS5（R3）的建议和ICHM3（R2）、S6及S9中的相关内容。通常需要开展胚胎-胎仔发育毒性和围产期毒性研究，除非有基于具体产品类型的特殊考虑并具有科学合理性。如果基因zhiliao产品拟用于有生育可能或妊娠人群，应研究产品对胎儿的影响（例如细胞因子局部生成后通过胎盘转运），开展胚胎-胎仔发育和围产期毒性试验。如果在一般毒理学试验中发现有潜在的生殖qiguan毒性反应，应开展生育力和早期胚胎发育毒性试验。基因整合位点高通量测序分析的新方法。北京病毒载体整合位点评估

基因整合位点研究的方法主要有5种: 荧光原位杂交、个体基因组文库筛选法、反向PCR、接头PCR、锚定PCR。浙江病毒载体整合位点实验室

单克隆扩增=变？相反的，可能是疗效持久的正面信号。那么在临床过程中发现迟发性单克隆慢病毒整合增殖就一定高度怀疑二次成瘤吗？其实CAR-Tzhiliao到目前为止还没有导致T细胞恶性liu的报告。一项调查年到2017年CAR-CD19临床I/II期ALL、NHL、CLL病人的回顾数据显示，研究队列中NHL患者有11%的继发性恶性liu发生率，与NHL常规zhiliao后继发性恶性liu的预期发生率相似(4–10%)。单克隆高度扩增可能维持药物持久性而非变，一项CAR-CD19在CLL中的临床试验发现，尽管CAR-CD19对CLL的临床效果不甚理想，但有一例病人的zhiliao效果非常好。浙江病毒载体整合位点实验室